Hallo Holger,
spectrum hat geschrieben: ↑24. März 2026, 22:57
Lacrymaria scheint ja, nach allem was ich so bisher gelesen habe, über längere Zeiträume Probleme zu machen, wenn man sie künstlich vermehrt (Stichwort "clonal-death").
Zu Paramecium gab es vereinzelte Veröffentlichungen, die ein ewiges Leben dieses Organismus in klonalen Kulturen diskutierten. Man hatte die Anzahl der Zellzyklen abgeschätzt und war verwundert, wie lange sie sich ohne die Möglichkeit eines Genaustauschs teilen. Ich müsste die Arbeiten heraussuchen und habe diesen Strang der Forschung nicht weiter verfolgt. In nicht-klonalen Kulturen von Paramecium findet man im Gegensatz hierzu besonders bei Neuansätzen in der Startphase zahlreiche Konjugationen, so dass sich auch diese Zellzyklen und die Reorganisation des nach der Konjugation zerfallenen Macronucleus gut beobachten lässt.
Ich selbst habe den Verlust einer klonalen Kultur im letzten Sommer hinnehmen müssen. Umstände waren vermutlich andere. Der eher anoxisch und mit Vorliebe im Dunkeln lebende Organismus ging wohl zugrunde, als die Morgensonne eine Weile in den Inkubator schien. Dabei bildete sich auch eine Algenkolonie heraus. Ich vermute der Organismus ging an dem Sauerstoff zugrunde. Ein Neuansatz aus den noch in der ergrünten Kultur vorhandenen Individuen misslang. Eine ebenso wertvolle Schwesterart hatte ich ein Jahr zuvor unter ähnlichen Umständen verloren. Auch hier ließen sich die noch vorhandenen Organismen nicht mehr erfolgreich in eine neue Kultur überführen und der Stamm ging zugrunde.
Kurios ist das allemal, da ich den Stamm über mehrere Jahre scheinbar algenfrei hielt. Das war obendrein verwunderlich, zumal man diesen Stamm auch mal über 9 Monate in irgendeiner Ecke vergessen konnte, ohne dass er Schaden nahm. Es müssen wenige hartnäckige Schläferalgen gewesen ein, die im Dunkeln über Jahre hinweg überlebten. Ich habe mir jedoch nicht die Mühe gemacht zu prüfen um welche Algen es sich bei dem grünen Mix handelte.
spectrum hat geschrieben: ↑24. März 2026, 22:57
Mich würde interessieren welches Nährmedium du ggf. für das geeignetste hältst.
Es gibt leider nicht das eine am besten geeignete Medium. Man muss das im Einzelnen ausprobieren. Bei den beiden erwähnten Schwesterarten hatte ich verschiedenes ausprobieren müssen, da sie zwar ähnliche Lebensräume, aber offensichtlich unterschiedliche Ansprüche zu haben scheinen. Chalkley's Medium setze ich nicht ein wegen des hohen Anteils an NaCl. Eher ist es auch die Bakterienzusammensetzung, die man hier am Leben halten muss. Die Organismen, für die ich mich interessiere leben zudem meist in Regenwasser gespeisten Mooren und ephemeren Tümpeln. Ich kann mir nicht vorstellen, dass diese Organismen auf hohe Gaben von Chlorid oder Kochsalz stehen.
Inzwischen werte ich einen Versuch nicht mehr als erfolgreiche Inkulturnahme, wenn es lediglich 1-3 Monate gelingt, den Organismus zu erhalten. Solche eine Kultur muss wenigstens über mehr als ein Jahr laufen, bevor ich sie Kultur nenne.
An einigen Arten beiße ich mir bis heute die Zähne aus. So gelang es mir bis heute nicht den am Heiligen Meer besonders im Frühjahr bislang massenhaft auftretenden Stentor amethystinus erfolgreich in Kultur zu nehmen. Einen neuen Anlauf mit veränderten Medien wollte ich heuer vornehmen. Doch am Heiligen Meer blieb heuer das massenhafte Vorkommen aus. Wir haben dieses Jahr keinen einzigen Burschen in den Proben finden können... Die Umstände bleiben im Dunkeln.
So ist sie, die Biologie. Selbst die Kultur in freier Natur ist nicht stabil.
Gerade läuft ein Versuch, einen Fund von Steinia am Heiligen Meer mit einem Algenmedium zu kultivieren. Algen sind eben die Leibspeise von Steinia.
Viele Grüße
Thilo
Auf so einem ähnlichen Modell hab ich übrigens auch das Video aufgenommen.